Unidades : Imagen

EQUIPO		APLICACIONES	ESPECIFICACIONES	UBICACIÓN
	CRIOSTATO HM550	Obtención de cortes semifinos (micras) de muestras histológicas congeladas	Rango de corte 1-100 micras	Instituto de Biomedicina (planta 0)
	ESCÁNER DE TEJIDOS ZEISS AXIOSCAN Z1	Digitalización de muestras (captura automatizada de todo el contenido de un portaobjetos)	-Microscopio óptico directo de campo claro. 4 objetivos entre 5-40 aumentos -Capacidad para 76 portaobjetos estándar (26x76 mm), 12 dobles (52x76 mm) y 3 cuádruples (102x76 mm)	Facultad de Medicina de Albacete (planta 0)
	FOTO-MICROSCOPIO LEICA DM 1000 LED	Observación y captura de muestras celulares e histológicas	Microscopio óptico directo. Campo claro, DIC y fluorescencia (azul, verde, naranja, rojo y rojo lejano). 7 objetivos entre 1.6-100 aumentos. Cámara CCD color y monocroma de 2.8 MPíxeles	Facultad de Medicina de Albacete (planta 0)
	FOTO-MICROSCOPIO ZEISS AXIO IMAGER.M2	Observación y captura de muestras celulares e histológicas	Microscopio óptico directo. Campo claro y oscuro, contraste de fases, DIC y fluorescencia (azul, verde, naranja, rojo y rojo lejano). 4 objetivos entre 10-63 aumentos. Módulo de luz estructurada para realización de cortes ópticos. Cámara CCD color o monocroma de 2.8 MPíxeles	Facultad de Medicina de Albacete (planta 0)
	LUPA LEICA EZ4	Microscopio estereoscópico	Con zoom 4,4:1, iluminación LED y conexión wifi	Facultad de Medicina de Albacete (planta 1)
	LUPA/ MICROSCOPIO DE FLUORESCEN-CIA POR ZOOM ZEISS AXIO Zoom.V16	Observación y captura de modelos animales de desarrollo (pez cebra, etc)	Campo claro, campo oscuro y fluorescencia (azul, verde y rojo). Hasta 16 aumentos. Cámara CMOS color de 12 MPíxeles. Excitación LED: 385, 430, 475, 545, 650 y 735 nm	Animalario
	MICROSCOPIO DE BARRIDO LÁSER CONFOCAL ZEISS LSM710	-Observación y captura de muestras celulares e histológicas -Videomicroscopía in vivo -Microscopía confocal -Captura de pilas de imágenes y reconstrucción 3D -Captura automatizada multiposición -Captura de mosaicos -Espectros de emisión de fluoróforos y signal unmixing	Microscopio invertido. Campo claro, DIC y fluorescencia (azul, verde, naranja y rojo lejano. 4 objetivos entre 10-63 aumentos. Cámara CCD color o monocroma de 2.8 MPíxeles. Líneas láser: 405, 458, 488, 514, 543, 594, 633 nm	Facultad de Medicina de Albacete (planta 0)
	MICROSCOPIO DE BARRIDO LÁSER CONFOCAL ZEISS LSM800	Observación y captura de muestras celulares e histológicas. Microscopía confocal. Captura de pilas de imágenes y reconstrucción 3D. Captura automatizada multiposición. Captura de mosaicos. Espectros de emisión de fluoróforos y signal unmixing. Tecnología airyscan (incremento de la resolución y de la relación señal/ruido).	-Microscopio óptico directo. Campo claro, DIC y fluorescencia (azul, verde y naranja). 4 objetivos entre 10-63 aumentos. Líneas láser: 405, 488, 562 y 640 -DetectorAiryscan	Facultad de Medicina de Albacete (planta 0)
	MICROSCOPIO Y ESTACIÓN DE ANÁLISIS DE ESTEREOLO-GÍA	Estudios de estereología: conteo insesgado de objetos y obtención de medidas 3D a partir de muestras celulares e histológicas	Microscopio óptico directo. Campo claro y oscuro, contraste de fases, DIC y fluorescencia (azul, verde, naranja, rojo y rojo lejano). 7 objetivos entre 1-100 aumentos. Módulo de luz estructurada para realización de cortes ópticos. Cámaras CCD color y monocroma de 2.8 MPíxeles. Software para cuantificación y reconstrucción 3D (Neurolucida y Stereo Investigator)	Facultad de Medicina de Albacete (planta 0)
	MICROSCOPIO ELECTRÓNICO JEOL-1400	Observación y captura de muestras a alta resolución (hasta 0.4 nm)	-Hasta 1.2x10⁶ aumentos. Dos cámaras CCD refrigeradas -Goniómetro motorizado para captura de mosaicos -Dos cámaras: CCD de 11 Mpíxeles y CMOS de 4.2 Mpíxeles	Facultad de Medicina de Albacete (planta 0)
	REGISTRO DE MOVIMIEN-TOS OCULARES tobii tx300 eye tracker	Captación de datos sobre movimientos oculares	Para investigación sobre comportamiento y movimientos oculares	Facultad de Medicina de Albacete (planta 0)
	ULTRA- MICROTOMO LEICA ULTRACUT UCT	Obtención de cortes finos (decenas de nanometros) y semifinos (500-1000 nm) de muestras histológicas embebidas en parafina	Cuchillas de vidrio y diamante	Facultad de Medicina de Albacete (planta 0)

ANÁLISIS DE IMÁGENES	Implementación de técnicas especializadas (realce, restauración, segmentación, operaciones binarias, procesado y representación de medidas, etc.) para la extracción de datos cuantitativos de imágenes digitales. Los estudios se diseñan a medida y se adaptan a las necesidades de cada diseño experimental. Los casos más sencillos se resuelven facilitando formación a los usuarios, los de complejidad media generando pequeñas rutinas automatizadas y los más complejos mediante el diseño de módulos de análisis automático/semiautomático. En todos los casos, se guarda registro de los parámetros del análisis, junto con los resultados, para posibilitar la evaluación externa. EJEMPLOS -Análisis densitométrico de experimentos de translocación núcleo-citoplasma -Detección automática y cuantificación de corrientes de calcio en larvas vivas de pez zebra -Cuantificación del número y superficie ocupada por vasos y cuerpos amiláceos en cortes hitológicos -Detección y medida semiautomática del número y longitud de sitios de entrecruzamiento en meiosis de espermatocitos -Evolución temporal del área de la cicatriz en ensayos de herida para la caracterización tumoral o de fármacos -Estudios densitométricos de ensayos tipo dot blot, western blot o matrices de anticuerpos.
MANTENIMIENTO DE EQUIPOS	Limpieza, alineamiento y pequeñas reparaciones de equipos de microscopía. Abarca todo el espectro de equipos, desde la categoría científica hasta los equipos de divulgación.
FORMACIÓN DE USUARIOS	Formación en microscopía óptica convencional, de fluorescencia y confocal, técnicas especiales (contraste de fases, DIC, campo oscuro, etc.), técnicas relacionadas (inmunofluorescencia, inmuhohistoquímica, tinciones convencionales y corte histológico) y análisis de imagen. La formación de usuarios tiene una orientación práctica y se realiza íntegramente sobre los equipos. La superación de un curso de formación específico es obligatoria para el uso de los equipos por parte de los usuarios.
CAPTURA DE IMÁGENES	Captura de imágenes utilizando cualquiera de los equipos del servicio: microscopios ópticos convencionales, de fluorescencia, confocales, equipos de estereología y escáner de tejidos. Fotomicroscopía y microscopía in vivo.
CORTE DE SECCIONES	Cortes procedentes del criostato o cortes ultrafinos y semifinos procedentes del ultramicrotomo.
TINCIÓN DE SECCIONES	Tinción y puesta a punto de tinciones convencionales, inmunofluorescencia e inmunohistoquímica en cortes histológicos o cultivos celulares.
DOCENCIA Y DIVULGACIÓN	Seminarios de microscopía, histología, biología celular y análisis de imagen. el SIB imparte varias clases en la asignatura de microscopía del máster de biomedicina experimental de la UCLM, ha impartido seminarios de microscopía en la asignatura de Técnicas instrumentales del grado de biotecnología y participa regularmente en actividades de divulgación entre la población general, como la semana del cerebro. Este servicio no requiere equipamiento especializado.

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Responsable de la unidad: Joaquim (Ximo) Soriano (Joaquim.Soriano@uclm.es, 967599200 ext. 8210)